【干货收藏贴】WB常见问题精品全集锦

日期：2017-12-19 13:31:31

做了很久的WB（western blot），走了很多弯路，但是WB想要做好并不难，总结WB实验中可能会遇到的问题，分析可能的原因及对应的解决方案，这就是实验成功的基石。

以下，我们先解决很多技术菌的疑惑，然后再着手汇总实验中常见问题和可能原因分析以及给出建议解决方案。

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实验问题全想通

WB常见问题分析

1.为什么我的细胞提取液中没有检测到目的蛋白？

原因有很多：

a) 细胞中不表达这种蛋白质，换一种细胞；

b) 细胞中的蛋白质被降解掉了，可加入蛋白酶抑制剂，抑制蛋白酶活性；

c) 抗体不能识别目标蛋白，多看看说明，是否有问题；

d) 酶降解可能是没有保持低温操作，样品保存不当，样品放置时间过长。

2.我做的蛋白质分子量很小（10KDa），请问怎么做WB？

a)可以选择PSQ 膜，同时缩短转移时间。也可以将两张膜叠在一起，再转移。其他按步骤即可；

b)也可选择孔径0.22um的PVDF膜或者NC膜，转膜时间缩短，另外可采用Tricine-SDS-PAGE体系。

3.我的目的带很弱，如何加强？

a)可以加大抗原上样量，这是最主要的；

b)也可以将一抗稀释比例降低；

c)还可以延长曝光时间。

4.DAB好还是ECL好？

DAB 有毒，但是比较灵敏，是HRP 最敏感的底物；

ECL结果容易控制，但被催化时灵敏度差一点，但如果达到阀值，就特别灵敏，可以检测pg 级抗原。

5.胶片是一片空白，是怎么回事？

如果能够排除下面的几个问题那么问题多半出现在一抗和抗原制备上。

a) 二抗的HRP 活性太强，将底物消耗光；

b) ECM底物中H₂O₂，不稳定，失活；

c) ECL底物没覆盖到相应位置；

d) 一抗选择不当二抗失活；

e) 二抗失活。

6.磷酸化抗体的检测样本制备时是否一定要加NaF等？

NaF是一种广谱磷酸化酶的抑制剂，一般最好加。但是不加也可以，大部分时候是不用加的。

7.细胞水平要做WB，多少细胞提的蛋白够做WB？

一般5×10⁶就足够。

8.如果上样量超载，要用什么方法来增加上样量？

可以浓缩样品，也可以根据目标分子量透析掉一部分小分子蛋白。一般地，超载30％是不会有问题的。如果已经超了不少了，而且小分子量的也要，可以考虑加大胶的厚度，可以试试1.5mm的。

9.大分子量蛋白200KDa，在做WB要注意什么？

a) 做200kd蛋白的WB时要注意，分离胶最好选择>7%的；剥胶时要小心；

b) 转移时间需要相应延长；要做分子量参照（否则出现杂带不知道如何分析）。

c) 转膜液中甲醇含量可适当降低，推荐使用湿装转膜效率更高哦!

10.免疫组化和WB可以用同一种抗体吗？

免疫组化时抗体识别的是未经变性处理的抗原决定簇（又称表位），有些表位是线性的，而有的属于构象型；线性表位不受蛋白变性的影响，天然蛋白和煮后的蛋白都含有；构象型表位由于受蛋白空间结构限制，煮后变性会消失。如果所用的抗体识别的是蛋白上连续的几个氨基酸，也就是线性表位，那么这种抗体可同时用于免疫组化和WB，而如果抗体识别构象形表位，则只能用于免疫组化。

11.WB中抗体的可以重复应用吗？

抗体工作溶液一般不主张储存反复使用，但是如抗体比较珍贵，可反复使用2－3次。稀释后应在2－3天内使用，4度保存，避免反复冻融。

12.上下槽缓冲液有何要求，怎样才能达到最佳效果？

无特殊要求。但一般是上槽放新鲜的缓冲液，下槽可以是重复使用过一两次的缓冲液。

WB 实验中常会出现各种问题，j9九游会登录入口首页生物专注于生产免疫检测相关产品多年，同时也跟技术菌们一起分享下 WB 实验中各种问题及应用对策，希望给您的实验带来实实在在的帮助~

WB问题汇总及解决建议

问题	原因	解决方案
条带形状不好看	胶凝的不均匀，聚合不好	灌胶前将溶液充分混匀
	某些样品盐浓度较高	除盐或将样品盐浓度调成一致
	缓冲液陈旧，成分改变	重配
	凝胶下面有气泡	电泳前先将气泡赶走
	电泳时温度过高	降低电流或电压
	样品中含有不溶性颗粒	样品充分搅拌混匀
	电极不平衡或者加样位置偏斜	调整电极和加样
蛋白条带信号弱	样品上样量不足或目的蛋白浓度过低	加大上样量或浓缩样品
	转移不完全或过转移	可以用丽春红染膜并结合染胶（考马斯亮蓝）后确定条带是否转至膜上或转移过头；适当调整转膜的时间和电流
	抗体浓度低	增加抗体浓度或延长孵育时间
	封闭过度	减少封闭剂的量或缩短时间，换用不同封闭剂类型
	显色剂失效	更换显色剂（吸取A、B液的枪头不可混用）
	显色或曝光时间不足	延长显色或曝光时间
	HRP 抑制剂	所用溶液和容器内避免含有叠氮化钠
转膜效率低	转膜缓冲液pH值与目的蛋白等电点相近	提高转膜缓冲液pH值
	凝胶与膜之间存在气泡	转膜前要排尽气泡
	转印膜种类选择不当	使用质量可靠的PVDF膜或硝酸纤维素膜
	电压或电流过小	湿转时20mA恒流，半干转时25V左右恒压
	转印时间过长或过短	根据蛋白大小及转印装置选择合适的转印时间
	湿转过程中环境温度过高	使用预冷的转膜缓冲液或将装置至于4度
显色或曝光后无条带	选用的一抗、二抗及显色方法不合适	选择合适的一抗、二抗和显色方法
	目的蛋白含量低于检测下限	加大上样量或浓缩样品
	抗体效价过低	增加抗体浓度
	抗体孵育时间不足	延长孵育时间，37°C孵育1小时以上
	抗体过度洗涤	减少洗涤时间及次数，加入的去垢剂不宜过强或过多
	加入HRP底物反应与曝光检测之间间隔时间过长	反应3到5分钟及时检测
背景高	膜没有完全均匀湿透	使用100% methanol浸透膜
	洗膜不充分	增加洗液体积和洗涤次数
	封闭物用量不足	提高封闭物浓度，孵育时保证封闭液完全浸没转印膜
	封闭物使用不当	检测生物素标记的蛋白时不可用脱脂奶粉封闭
	封闭时间不够	室温37度封闭1小时以上，4度封闭过夜
	抗体非特异性结合	降低抗体浓度，减少孵育时间
	一抗稀释度不适宜	对抗体进行滴度测试，选择最适宜的抗体稀释度
	一抗孵育的温度偏高	建议4℃结合过夜
	抗体浓度过高或洗涤不够	降低抗体浓度，增加洗涤次数和时间
	化学显色底物过多	按说明书加入适量的显色底物
蛋白条带位置（大小）不对	相对电荷	氨基酸电荷的组成
	胶浓度	不同浓度的胶跑出的蛋白条带的位置可能有所偏差，调整浓度
	抗体孵育不充分	增加抗体浓度，延长孵育时间
	酶失活	直接将酶和底物进行混合，如果不显色则说明酶失活了。选择在有效期内、有活性的酶联物
	目的蛋白存在翻译后修饰或剪切体	查询相关文献确定
	标本中不含靶蛋白或靶蛋白含量太低	设置阳性对照比对结果，增加标本上样量
杂带多	目的蛋白有多个修饰位点，本身可以呈现多条带	查阅文献或进行生物信息学分析，获得蛋白序列的修饰位点信息，通过去修饰确定蛋白实际大小
	样本处理过程中目的蛋白发生降解	加入蛋白酶抑制剂；样本处理时在冰上操作
	杂蛋白多	处理目的蛋白
	抗体特异性不强	使用特异性强的抗体
	抗体孵育时间过久	减少抗体孵育时间
	二抗与抗原有交叉反应	选择合适的封闭物
	二聚体或多聚体存在	增加蛋白质变性过程及强度
	底物显色与曝光时间过长	缩短显色及曝光的时间
大分子量WB	膜孔径太小	更换孔径较大的膜
	转膜电压电流低	提高电压/电流
	转膜时间短	延长转膜时间
	胶浓度太大	使用低浓度的胶
	转膜缓冲液配方不合适	调整转膜缓冲液中甲醇及SDS浓度
背景有黑色斑点	抗体与封闭试剂反应	使用前过滤封闭试剂
背景有黑色斑点	HRP 偶联二抗中有聚集体	过滤二抗试剂，去除聚集体
暗背景上白色带	HRP 含量过高	降低酶联二抗的浓度
背景有不均匀的白色斑点	抗体分布不均匀	孵育抗体时使用摇床